coloração de Ziehl-Neelsen

As bactérias álcool-ácido resistentes têm uma parede celular única, que contém altas concentrações de ácidos micólicos (ácidos graxos de cadeia longa), tornando-as impermeáveis à coloração de Gram padrão e resistentes à descoloração com soluções de álcool-ácido depois de coradas. A técnica de Ziehl-Neelsen usa carbolfucsina (um corante vermelho) com calor para ajudar a coloração a penetrar na parede celular cerosa; após a aplicação do descolorante álcool-ácido, os organismos álcool-ácido resistentes retêm a cor vermelha, enquanto os não álcool-ácido resistentes a perdem e captam o contracorante azul de metileno, aparecendo em azul. O método de Kinyoun é uma variante de coloração a frio que não requer aquecimento. A coloração por fluorocromo (auramina-rodamina) é uma alternativa mais sensível usada em laboratórios de alto volume, visualizada à microscopia de fluorescência. Do ponto de vista clínico, a coloração álcool-ácido resistente é o teste diagnóstico rápido fundamental na suspeita de tuberculose, realizado em amostras de escarro (baciloscopia, BAAR) enquanto se aguarda a confirmação definitiva por cultura em meio de Löwenstein-Jensen. Também é usada para diagnosticar infecções por Mycobacterium leprae (hanseníase) e pelo complexo Mycobacterium avium (MAC) em pacientes imunocomprometidos, particularmente aqueles com AIDS. As espécies de Nocardia são 'parcialmente álcool-ácido resistentes' (fracamente álcool-ácido resistentes), o que as distingue de Actinomyces (não álcool-ácido resistente) em casos de infecção pulmonar ou do SNC. Entender a coloração álcool-ácido resistente é crucial para as provas porque cobra diretamente o conhecimento da estrutura da parede celular das micobactérias, dos algoritmos diagnósticos da tuberculose e da diferenciação de organismos de aparência semelhante em cenários clínicos com infiltrados pulmonares, tosse crônica ou pacientes imunocomprometidos com infecções atípicas.